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行業(yè)新聞
In-Cell Western 免疫熒光定量分析信號(hào)轉(zhuǎn)導(dǎo)
In-Cell Western(ICW)是一種用于定量檢測(cè)細(xì)胞內(nèi)蛋白表達(dá)量或信號(hào)傳導(dǎo)的方法,既簡(jiǎn)單又經(jīng)濟(jì)高效。ICW檢測(cè)方法將細(xì)胞接種在微孔板中,然后進(jìn)行固定/通透化,利用特異性一抗,紅外染料偶聯(lián)的二抗體進(jìn)行標(biāo)記。通過Azure Biosystems Sapphire?雙模式多光譜激光成像系統(tǒng)獲取熒光信號(hào),可以精確測(cè)量細(xì)胞信號(hào)通路的誘導(dǎo)或抑制,并能夠在單個(gè)孔板上進(jìn)行多種處理和多次重復(fù)。
ICW技術(shù)中免疫熒光檢測(cè)
在生命科學(xué)研究領(lǐng)域,尤其是信號(hào)轉(zhuǎn)導(dǎo)和磷酸化蛋白的分析中,蛋白表達(dá)水平的量化越來越重要。這些研究中通常需要分析許多樣品,密切的檢查信號(hào)轉(zhuǎn)導(dǎo)事件的事件,并評(píng)估各種實(shí)驗(yàn)條件。In-Cell Western(ICW)定量免疫熒光測(cè)定法,簡(jiǎn)化的實(shí)驗(yàn)流程,可以并行處理并檢測(cè)多個(gè)試驗(yàn)樣品,高通量進(jìn)行實(shí)驗(yàn)程序和數(shù)據(jù)分析。微孔板檢測(cè)將Western Blot的特異性與ELISA的重現(xiàn)性、高通量相結(jié)合,能夠有效的定量多個(gè)樣品中相對(duì)蛋白水平和信號(hào)轉(zhuǎn)導(dǎo)事件。In-Cell Western技術(shù)也被稱為cytoblots(細(xì)胞印跡),細(xì)胞ELISA(cLISA),細(xì)胞內(nèi)ELISA(ICE)或FACE(基于快速激活的細(xì)胞ELISA)。
圖1. ICW技術(shù)示意圖。在96孔板或384孔板中培養(yǎng)細(xì)胞,并進(jìn)行固定和通透處理,再通過IRDye偶聯(lián)的二抗,通過免疫熒光檢測(cè)靶蛋白的熒光信號(hào),對(duì)微孔板進(jìn)行成像并量化信號(hào)強(qiáng)度。
ICW技術(shù)基于標(biāo)準(zhǔn)的免疫熒光技術(shù),二抗中標(biāo)記了近紅外熒光染料,兩種NIR熒光染料能夠被檢測(cè)器檢測(cè),提供雙通道檢測(cè)信號(hào),使用Sapphire?雙模式多光譜激光成像系統(tǒng)(Azure Biosystems)對(duì)每個(gè)孔中細(xì)胞群體的熒光信號(hào)成像,得到檢測(cè)結(jié)果。ICW使用近紅外的原因是,在近紅外波長范圍中,塑料,細(xì)胞,化學(xué)試劑的自發(fā)熒光背景很低,背景值遠(yuǎn)低于可見光波長范圍。因此定量Western檢測(cè)中,非常適合使用近紅外波長進(jìn)行檢測(cè)。
ICW檢測(cè)可以使用3種熒光通道進(jìn)行檢測(cè),一種可見光熒光通道可用于針對(duì)細(xì)胞染色或總蛋白染色進(jìn)行歸一化(normalize),以通過校正孔與孔之間細(xì)胞數(shù)的差異來提高準(zhǔn)確性。被研究的兩種靶蛋白使用2個(gè)近紅外熒光通道進(jìn)行檢測(cè),類似于近紅外熒光Western Blot,可以同時(shí)檢測(cè)兩種目的蛋白。對(duì)于磷酸化蛋白分析,一個(gè)紅外通道檢測(cè)靶蛋白,另一個(gè)紅外通道檢測(cè)磷酸化靶蛋白。
圖2:ERK的磷酸化對(duì)信號(hào)通路刺激的響應(yīng)。 用EGF刺激A431細(xì)胞。 (a)用磷酸-ERK抗體(綠色; 800nm)檢測(cè)到ERK磷酸化。 還檢測(cè)到每個(gè)孔中的ERK總水平(紅色; 700 nm)。 重疊圖像中的黃色表示700和800 nm信號(hào)重疊。 在96孔板的一部分中顯示了兩排孔。 (b)熒光定量。 將磷酸ERK信號(hào)相對(duì)于總ERK信號(hào)進(jìn)行歸一化,以校正細(xì)胞數(shù)之間的差異。 與靜止?fàn)顟B(tài)相比,EGF刺激的細(xì)胞顯示ERK磷酸化增加> 16倍。
轉(zhuǎn)載自:Analytical Biochemistry 338:136–142.
Western Blot的替代方法
ICW檢測(cè)可以作為Western Blot(WB)的替代方法。在ICW檢測(cè)中,數(shù)百種樣品能夠被快速檢測(cè),靶蛋白在固定的細(xì)胞中進(jìn)行原位檢測(cè),輸出高精度、量化數(shù)據(jù)結(jié)果。而在WB檢測(cè)中,蛋白經(jīng)歷了細(xì)胞裂解,電泳和膜轉(zhuǎn)移步驟,這些步驟費(fèi)時(shí)費(fèi)事,而且引入很多變量降低了檢測(cè)精度。在微孔板中,少量固定劑就能夠終止細(xì)胞活動(dòng),保存細(xì)胞內(nèi)容物。ICW能夠均勻、精確的終止實(shí)驗(yàn)反應(yīng);隨著時(shí)間的推移,動(dòng)態(tài)分析細(xì)胞信號(hào)轉(zhuǎn)導(dǎo)事件,并且實(shí)驗(yàn)重復(fù)性更好。由于實(shí)驗(yàn)過程中引入的變量減少,ICW分析的標(biāo)準(zhǔn)差低于Western印跡(圖3;WB分析的CV = 0.27; ICW分析的CV = 0.08-0.16)。 WB的變異性和誤差增加可能會(huì)掩蓋蛋白質(zhì)表達(dá)水平的統(tǒng)計(jì)學(xué)顯著變化,而這些蛋白質(zhì)表達(dá)水平的統(tǒng)計(jì)學(xué)變化能被ICW捕捉到。
圖3. WB和ICW分析中的變異性比較。 用催產(chǎn)素刺激子宮肌細(xì)胞的原代培養(yǎng)。 然后使用WB和ICW分析,在重復(fù)樣品中檢測(cè)GAPDH和PMLC 20的水平。 (a)將兩個(gè)相同的蛋白質(zhì)印跡的條帶強(qiáng)度繪制為兩個(gè)印跡中每個(gè)印跡的13個(gè)樣品的平均值的比例(印跡1為藍(lán)色;印跡2為紅色)。 CV為0.27。 (b)來自兩個(gè)ICW板的重復(fù)孔的信號(hào)強(qiáng)度,以兩個(gè)板中每個(gè)板的平均值的比例繪制(板1為藍(lán)色;板2為紅色)。 CV范圍為0.08至0.16。
轉(zhuǎn)載自: PLoS One 5(4):e9965
ICW檢測(cè)結(jié)果中的信號(hào)增減與WB相似,IC50值也相似,但是標(biāo)準(zhǔn)差更小。在評(píng)估EGF受體抑制劑的實(shí)驗(yàn)中,ICW檢測(cè)得到的IC50數(shù)值與發(fā)表文獻(xiàn)一致。384孔的ICW功能測(cè)定,用于監(jiān)測(cè)多巴胺D2和D2 G蛋白偶聯(lián)受體(GPCR)的藥理作用。 GPCR激動(dòng)劑誘導(dǎo)ERK磷酸化,pERK作為細(xì)胞內(nèi)生化標(biāo)記物,用于評(píng)估多巴胺D2和D3受體激動(dòng)劑和拮抗劑。 這種非放射性測(cè)定的結(jié)果與其他功能測(cè)定相當(dāng)。 由于ERK是一種內(nèi)源性報(bào)告蛋白,因此無需進(jìn)行細(xì)胞修飾即可導(dǎo)入嵌合G蛋白或報(bào)告基因。 另一項(xiàng)GPCR激活研究直接將ICW檢測(cè)技術(shù)與公認(rèn)的cAMP結(jié)合和積累分析技術(shù)進(jìn)行了比較。 CREB磷酸化作為內(nèi)源性A 2A受體激活的標(biāo)志,其結(jié)果與放射性配體結(jié)合研究和cAMP免疫分析的結(jié)果密切相關(guān)。
ICW檢測(cè)的應(yīng)用
圖4. 用Wnt3a刺激細(xì)胞后,β-連環(huán)蛋白積聚的動(dòng)力學(xué)。 (a)用ICW測(cè)定法評(píng)估細(xì)胞β-連環(huán)蛋白的時(shí)間和劑量依賴性積累。 將L細(xì)胞與Wnt3a孵育,然后對(duì)β-catenin(合并圖像中的黃色)和DNA含量(紅色)染色。 (b)定量β-連環(huán)蛋白的積累。 在Wnt3a刺激的30分鐘內(nèi),該水平被上調(diào),在6至8小時(shí)之間顯示出增加的強(qiáng)度,并在10小時(shí)后開始達(dá)到平穩(wěn)狀態(tài)。 圖顯示了兩個(gè)獨(dú)立的實(shí)驗(yàn),每個(gè)實(shí)驗(yàn)一式四份。
轉(zhuǎn)載自:PLoS One 3(10):e3498
ICW檢測(cè)提供了一種整體測(cè)量的“快照”式結(jié)果,在細(xì)胞固定的那一刻,進(jìn)行信號(hào)轉(zhuǎn)導(dǎo)和蛋白表達(dá)狀態(tài)的檢測(cè)。對(duì)于貼壁細(xì)胞研究,ICW分析是流式細(xì)胞術(shù)的一種便捷替代方法,對(duì)于不需要高含量篩選(high content screening :HCS)的研究,提供了一種低成本的替代方案。ICW檢測(cè)適用于監(jiān)視蛋白質(zhì)水平和磷酸化狀態(tài),但不能微觀分析單個(gè)細(xì)胞的特征,例如蛋白質(zhì)易位或細(xì)胞形狀。 ICW分析已用于分析:1. 蛋白質(zhì)的磷酸化和信號(hào)傳導(dǎo),2. 藥物對(duì)信號(hào)通路的脫靶作用,3. 信號(hào)事件的時(shí)機(jī)和動(dòng)力學(xué)( 圖4),4. 病毒載量的定量分析,5. 遺傳毒性測(cè)定和細(xì)胞增殖測(cè)定,6. 幽門螺桿菌誘導(dǎo)的上皮信號(hào)轉(zhuǎn)導(dǎo)原位分析,7. 糖蛋白分析,8. 文庫篩選和9.單克隆抗體克隆的篩選。
使用Azure Biosystems Sapphire?雙模式多光譜激光成像系統(tǒng)進(jìn)行ICW實(shí)驗(yàn)
材料和方法
培養(yǎng)細(xì)胞
連續(xù)稀釋HeLa細(xì)胞,并以每孔0.2 mL的體積接種到96孔無菌組織培養(yǎng)板中,并生長至約80%匯合。 固定所有孔,并在室溫下使用100%甲醇滲透15分鐘。
In-cell Western(ICW)實(shí)驗(yàn)
固定和透化后,將細(xì)胞在PBS中沖洗,在室溫下用PBS中的1%魚明膠封閉1小時(shí),然后在4°C下過夜孵育α-微管蛋白和β-肌動(dòng)蛋白一抗。 用PBS洗滌樣品3次,再與AzureSpectra 550和AzureSpectra 800偶聯(lián)的二抗孵育60分鐘。
二抗體與RedDot?1核染色一起孵育,以使總細(xì)胞數(shù)歸一化。板塊在成像前,用PBS洗滌樣品3次。
成像
洗滌后,使用板焦點(diǎn)設(shè)置選項(xiàng),在Azure Biosystems Sapphire?雙模式多光譜激光成像系統(tǒng)上對(duì)微孔板進(jìn)行成像。
結(jié)果與結(jié)論
在本實(shí)例中,我們展示了使用Azure Biosystems Sapphire?雙模式多光譜激光成像系統(tǒng),原位定量細(xì)胞內(nèi)蛋白質(zhì)的能力。 HeLa細(xì)胞在96孔板中生長,先用α-微管蛋白和β-肌動(dòng)蛋白抗體檢測(cè),然后用分別與AzureSpectra 550和AzureSpectra 800偶聯(lián)的同種型合適的二抗進(jìn)行探測(cè)。 將所有孔與RedDot?1核染色液一起溫育以標(biāo)準(zhǔn)化總細(xì)胞數(shù)。 圖像使用Azure Biosystems Sapphire?雙模式多光譜激光成像系統(tǒng)采集,顯示在圖6中。所示的代表性圖像證明了Sapphire?雙模式多光譜激光成像系統(tǒng)可以實(shí)現(xiàn)的高靈敏度和特異性的信號(hào)采集。
在96孔板上進(jìn)行細(xì)胞ICW分析可準(zhǔn)確測(cè)定細(xì)胞內(nèi)蛋白質(zhì)的原位表達(dá); 并提供了一種高通量方法,可評(píng)估多種刺激,多個(gè)終點(diǎn),目的蛋白的表達(dá)水平,并能在單個(gè)孔板上重復(fù)實(shí)驗(yàn)結(jié)果。 通過使用NIR抗體和Azure Biosystems Sapphire?雙模式多光譜激光成像系統(tǒng),還可以進(jìn)行多重分析,從而進(jìn)一步提高了通量。
圖5. 將連續(xù)稀釋的HeLa細(xì)胞播種到96孔板中,培養(yǎng),固定和透化。A)列1-3使用AzureSpectra 550(綠色)染料檢測(cè)β-肌動(dòng)蛋白。B)第3-6列用AzureSpectra 800(藍(lán)色)染料檢測(cè)α-微管蛋白。C)整個(gè)板塊用RedDot1核染色作為歸一化對(duì)照(紅色)。D)各個(gè)通道同時(shí)掃描,然后用Sapphire Capture軟件合并成一個(gè)單一的復(fù)合圖像。
Sapphire雙模式多光譜激光成像系統(tǒng)是新一代的激光掃描成像系統(tǒng),提供無與倫比的靈敏度、超高的分辨率、更寬的動(dòng)態(tài)范圍、提供更高質(zhì)量數(shù)據(jù)。
● 唯一使用掃描式和CCD檢測(cè)雙模式的分子成像系統(tǒng)
● 唯一使用PMT,APDs和CCD三種檢測(cè)器進(jìn)行信號(hào)采集的系統(tǒng)
● 分辨率可達(dá)10μm,分辨更細(xì)節(jié)
● 動(dòng)態(tài)范圍可達(dá)6logs,定量更準(zhǔn)確
● 軟件界面友好,易于使用
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